Экспериментальное обоснование возможности прогнозирования развития нейродегенеративных заболеваний, в основе патогенеза которых лежит нарушение функции гамма-синуклеина, по влиянию регуляторов дофаминергической системы на внутриглазное давление.
Аннотация
Синуклеины – синаптические белки участвующие в процессе везикулярного транспорта и высвобождении медиаторов, в частности дофамина. Патологическая агрегация членов этого семейства ассоциирована с развитием ряда нейродегенеративных заболеваний (НДЗ), а для γ-синуклеина показана также связь с развитием глаукомы. На данный момент не существует доступных диагностических методов, позволяющих выявлять группы риска развития НДЗ или других заболеваний, связанных с нарушением функции γ-синуклеина. Сложность разработки таких методов объясняется тем, что диагноз НДЗ ставится при появлении клинических признаков заболевания, когда процесс уже практически необратим.
Цель исследования – экспериментальное обоснование возможности прогнозирования нарушения функции γ-синуклеина по влиянию регуляторов адренергической и дофаминергической системы на уровень внутриглазного давления (ВГД).
Методика. На линии мышей с инактивированным геном, кодирующим γ-синуклеин (γ-KO), разработан способ диагностики нарушения функции данного белка, включающий определение внутриглазного давления (ВГД) до и после инстилляции в конъюнктивальную полость регуляторов дофаминергической системы.
Результаты.У мышей γ-KO выявлено значительное снижение ВГД в ответ на инстилляцию Мелатонина 0,1%, Галоперидола 0,2%, и Дофамина 10% по сравнению с мышами дикого типа.
Заключение. Предложенный способ измерения ВГД после инстилляции препаратов, влияющих на метаболизм дофамина, позволяет выявлять и прогнозировать развитие недостаточности функции γ-синуклеина и его влияние на регуляцию внутриглазного давления. Предлагаемый метод позволяет формировать группы риска для динамического наблюдения и выбора превентивных лечебных мероприятий.
Скачивания
Литература
2. Угрюмов М.В. Нейродегенеративные заболевания: от генома до целостного организма. М.: Научный мир; 2014: 22-44.
3. Collier T.J., Redmond D.E., Steece-Collier K., Lipton J.W., Manfredsson F.P. Is Alpha-Synuclein Loss-of-Function a Contributor to Parkinsonian Pathology? Evidence from Non-human Primates. Front Neurosci. 2016; 29: 10-12. doi: 10.3389/fnins.2016.00012.
4. Sanjeev A., Mattaparthi V.K. Computational Study on the Role of γ-Synuclein in Inhibiting the α-Synuclein Aggregation. Cent Nerv Syst Agents Med Chem. 2019; 19 (1): 24-30. doi: 10.2174/1871524918666181012160439.
5. Тарасова Т. В., Устюгов А. А., Нинкина Н. Н., Скворцова В. И. Новая линия генетически модифицированных мышей с конститутивным нокаутом гена альфа-синуклеина для изучения патогенетических аспектов дифференциального поражения дофаминергических нейронов. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2016; 60(3): 4–9. 6. Anwar S., Peters O., Millership S., Ninkina N., Doig N., Connor-Robson N., Threlfell S., Kooner G., Deacon R.M., Bannerman D.M., Bolam J.P., Chandra S.S., Cragg S.J., Wade-Martins R., Buchman V.L. Functional alterations to the nigrostriatal system in mice lacking all three members of the synuclein family. J Neurosci. 2011; 31(20):7264-74. doi: 10.1523/JNEUROSCI.6194-10.2011.
7. Burré J., Sharma M., Tsetsenis T., Buchman V., Etherton M.R., Südhof T.C. Alpha-synuclein promotes SNARE-complex assembly in vivo and in vitro. Science. 2010; 329:1663-7. doi: 10.1126/science.1195227.
8. Millership S., Ninkina N., Guschina I.A., Norton J., Brambilla R., Oort P.J., Adams S.H., Dennis R.J., Voshol P.J., Rochford J.J., Buchman V.L., Increased lipolysis and altered lipid homeostasis protect γ-synuclein null mutant mice from diet-induced obesity. Proc Natl Acad Sci USA. 2012; 18: 109(51): 20943-8. doi: 10.1073/pnas.1210022110.
9. Vargas K.J., Makani S., Davis T., Westphal C.H., Castillo P.E., Chandra S.S. Synucleins regulate the kinetics of synaptic vesicle endocytosis. J Neurosci. 2014; 34(28): 9364-76. doi: 10.1523/JNEUROSCI.4787-13.2014.
10. Buchman V.L., Adu J., Pinon L.G., Ninkina N.N., Davies A.M. Persyn, a member of the synuclein family, influences neurofilament network integrity. Nat Neurosci. 1998; 1(2): 101-3. doi: 10.1038/349.
11. Ninkina N., Papachroni K., Robertson D.C., Schmidt O., Delaney L., O'Neill F., Court F., Rosenthal A., Fleetwood-Walker S.M., Davies A.M., Buchman V.L. Neurons expressing the highest levels of gamma-synuclein are unaffected by targeted inactivation of the gene. Mol Cell Biol. 2003; 23(22): 8233-45. doi: 10.1128/mcb.23.22.8233-8245.2003.
12. Peters O.M., Shelkovnikova T., Highley J.R., Cooper-Knock J., Hortobágyi T., Troakes C., Ninkina N., Buchman V.L. Gamma-synuclein pathology in amyotrophic lateral sclerosis. Ann Clin Transl Neurol. 2015; 2(1): 29-37. doi: 10.1002/acn3.143.
13. Peters O.M., Millership S., Shelkovnikova T.A., Soto I., Keeling L., Hann A., Marsh-Armstrong N., Buchman V.L., Ninkina N. Selective pattern of motor system damage in gamma-synuclein transgenic mice mirrors the respective pathology in amyotrophic lateral sclerosis. Neurobiol Dis. 2012; 48(1): 124-31. doi: 10.1016/j.nbd.2012.06.016.
14. Ninkina N., Peters O., Millership S., Salem H., van der Putten H., Buchman V.L. Gamma-synucleinopathy: neurodegeneration associated with overexpression of the mouse protein. Hum Mol Genet. 2009; 15: 18(10): 1779-94. doi: 10.1093/hmg/ddp090.
15. Galvin J.E., Giasson B., Hurtig H.I., Lee V.M., Trojanowski J.Q. Neurodegeneration with brain iron accumulation, type 1 is characterized by alpha-, beta-, and gamma-synuclein neuropathology. Am J Pathol. 2000; 157(2): 361-8. doi: 10.1016/s0002-9440(10)64548-8.
16. Galvin J.E., Uryu K., Lee V.M., Trojanowski J.Q. Axon pathology in Parkinson's disease and Lewy body dementia hippocampus contains alpha-, beta-, and gamma-synuclein. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999; 96(23): 13450-5. doi: 10.1073/pnas.96.23.13450.
17. Surgucheva I., McMahan B., Ahmed F., Tomarev S., Wax M.B., Surguchov A. Synucleins in glaucoma: implication of gamma-synuclein in glaucomatous alterations in the optic nerve. J Neurosci Res. 2002; 68(1): 97-106. doi: 10.1002/jnr.10198.
18. Surgucheva I., Ninkina N., Buchman V.L., Grasing K., Surguchov A. Protein aggregation in retinal cells and approaches to cell protection. Cell Mol Neurobiol. 2005; 25(6): 1051-66.
19. Surguchov A., McMahan B., Masliah E., Surgucheva I. Synucleins in ocular tissues. J Neurosci Res. 2001; 65(1): 68-77. doi: 10.1002/jnr.1129
20. Senior S.L., Ninkina N., Deacon R., Bannerman D., Buchman V.L., Cragg S.J. Wade-Martins R. Increased striatal dopamine release and hyperdopaminergic-like behaviour in mice lacking both alpha-synuclein and gamma-synuclein. Eur J Neurosci. 2008; 27(4): 947-57. doi: 10.1111/j.1460-9568.2008.06055.x.
21.Pescosolido N., Parisi F., Russo P., Buomprisco G., Nebbioso M. Role of dopaminergic receptors in glaucomatous disease modulation. Biomed Res Int. 2013; 2013:193048. doi: 10.1155/2013/193048.
22. Страхов В.В., Ермакова А.В., Попова А.А., Корчагин Н.В. Исследование межокулярной асимметрии – важный инструмент в диагностике и мониторинге первичной глаукомы. РМЖ «Клиническая Офтальмология». 2014; 2: 93.
23. Левин О.С., Амосова Н.А. Дифференциальная диагностика атипичного паркинсонизма. Диагностика и лечение экстрапирамидных расстройств. М; 2000: 71–83.
24. Oaks A.W., Marsh-Armstrong N., Jones J.M., Credle J.J., Sidhu A. Synucleins antagonize endoplasmic reticulum function to modulate dopamine transporter trafficking. PLoS One. 2013; 8(8): e70872. doi: 10.1371/journal.pone.0070872.