Антифибротическое действие плацентарных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток при фиброзе печени

  • Дмитрий Юрьевич Гребнев ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России 620028, Екатеринбург, Россия, ул. Репина, д. 3; ГАУЗ СО «Институт медицинских клеточных технологий»,620026, Екатеринбург, Россия, ул. Карла Маркса, д. 22а https://orcid.org/0000-0002-5698-8404
  • Ирина Юрьевна Маклакова ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России 620028, Екатеринбург, Россия, ул. Репина, д. 3; ГАУЗ СО «Институт медицинских клеточных технологий»,620026, Екатеринбург, Россия, ул. Карла Маркса, д. 22а https://orcid.org/0000-0002-6895-7947
  • Василий Николаевич Слаутин ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России 620028, Екатеринбург, Россия, ул. Репина, д. 3 https://orcid.org/0000-0002-5698-8404
  • Анастасия Дмитриевна Александрова ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России 620028, Екатеринбург, Россия, ул. Репина, д. 3 https://orcid.org/0000-0002-3600-8894
Ключевые слова: плацентарные мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, фиброз печени, миофибробласты, перисинусоидальные клетки печени Ито

Аннотация

К развитию  фиброза печени приводит большое количество хронических заболеваний печени, таких как хронические вирусные гепатиты, алкогольная интоксикация, первичный склерозирующий холангит, аутоиммунные гепатиты и другие. В патогенезе развития фиброза печени на фоне действия этиологического фактора ведущее значение отводится активации перисинусоидальных клеток печени Ито с последующей их дифференцировкой в миофибробластоподобные клетки, которые являются центральными регуляторами фиброгенеза. В настоящем исследовании проводится аллогенная трансплантация мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток (ММСК), выделенных из плаценты животным с фиброзом печени. Эти клетки способны к синтезу ряда факторов, которые потенциально можно рассматривать как антифиброгенными.

Цель исследования – оценка возможности использования плацентарных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток для лечения фиброза печени.

Методика. Эксперименты выполнены на 40 мышах самцах в возрасте 8-10 недель. Фиброз моделировали путем внутрибрюшинного введения тетрахлорметана в количестве 2 мкл/г веса животного в течение 6 недель 2 раза в неделю. Далее животные, у которых был индуцирован фиброз печени, были разделены на основную группу и группу сравнения. Основная группа — мыши, которым однократно внутривенно вводили ММСК в количестве 1×10⁶ клеток/мышь в 0,2 мл. Группу сравнения составили мыши, которым после моделирования фиброза не вводили клетки. Через 5 недель после моделирования фиброза печени производилась оценка эффективности проводимой терапии. Выделение культуры плацентарных ММСК осуществлялось из хориона плаценты согласно методу А.С. Тепляшина с соавт. 2004. Жизнеспособность выделенных клеток оценивали с помощью 7-AAD. Для оценки тяжести фиброза использовалась шкала METAVIR. Количественный анализ содержания коллагена в печени проводили с использованием набора Picro Sirius Red Stain Kit. В гистологическом препарате печени проводилось определение количества MMP9, MMP13, TIMP1, α-SMA положительных клеток, CD45 положительных клеток.  В гомогенате печени оценивалось содержание факторов роста HGF и TGF-β , Pro-Collagen I alpha 1 β. В сыворотке крови определялись уровни провоспалительных цитокинов: интерлейкина-1β, фактора некроза опухоли-α. Полученные данные обрабатывались вариационно-статистическим методом с использованием t-критерия Стьюдента. При отсутствии нормальности распределения статистическую значимость различий определяли, используя непараметрический критерий Манна-Уитни (U). Различия считали статистически значимыми при p<0,05.

Результаты. Через 5 недель после моделирования фиброза печени на фоне трансплантации ММСК отмечено снижение активности фиброза по шкале METAVIR на 50 %. Трансплантация ММСК сопровождалась уменьшением содержания CD 45+ клеток в печени. Это приводило к снижению уровня провоспалительных цитокинов в сыворотке крови. Введение ММСК также сопровождалось уменьшением площади соединительной ткани на 33,1 %. Площадь гистологического препарата, окрашенного на α-SMA, а также количество α-SMA положительных клеток после введения ММСК сократилась на 28,3 % и на 31,0 % соответственно.  Введение ММСК привело к снижению количества MMP9 и увеличению MMP13 продуцирующих клеток, уменьшению количества TIMP1 положительных клеток. Также выявлено снижение уровня TGF-β, увеличение HGF в печени. При анализе биохимических показателей сыворотки получено, сто введение ММСК привело к снижению активности трансаминаз, восстановлению белковосинтетической функции печени, снижение уровня общего билирубина.

Заключение. Полученные результаты свидетельствуют о высоком терапевтическом потенциале плацентарных ММСК. Использование ММСК, выделенных из хориона плаценты, можно рассматривать как перспективный неоперативный способ лечения фиброза печени.

Скачивания

Данные скачивания пока недоступны.

Литература

1. Lee Ch., Kim M., Yoon M., et al. Mesenchymal Stem Cells Influence Activation of Hepatic Stellate Cells, and Constitute a Promising Therapy for Liver Fibrosis. Biomedicines. 2021; 2;9(11):1598. doi: 10.3390/biomedicines9111598.
2. LV Y-F., Xie Ch-Sh., Liu Z-X., et al. Sevelamer reverses liver fibrosis by deactivation of hepatic stellate cells. Biochemical Pharmacology. 2024; 8:116121. doi: 10.1016/j.bcp.2024.116121.
3. Beeravolu N., McKee C., Alamri A., et al. Isolation and characterization of mesenchymal stromal cells from human umbilical cord and fetal placenta. J. Vis. Exp. 2017; 3(122):55224 1–13. DOI: 10.3791/55224.
4. Stamatopoulos A., Stamatopoulos T., Gamie Z., et al. Mesenchymal stromal cells for bone sarcoma treatment: Road to clini8cal practice. J Bone Oncol. 2019; 19:16:100231. doi: 10.1016/j.jbo.2019.100231.
5. Peng Y-Q., Wu Z-C., Xu Z-B., et al. Mesenchymal stromal cells-derived small extracellular vesicles modulate DC function to suppres Th2 responses via IL-10 in patient with allergic rhinitis. Eur J Immunol. 2022; 52(7):1129-1140. doi: 10.1002/eji.202149497.
6. Li W., Jiang H., Feng J.-M. Isogenic mesenchymal stem cells transplantation improves a rat model of chronic aristolochic acid nephropathy via upregulation of hepatic growth factor and downregulation of transforming growth factor β1, Mol Cell Biochem. 2012; 368(1-2): 137-45. doi: 10.1007/s11010-012-1352-5.
7. El-Derany M.O., Said R.S., El-Demerdash E. Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells Reverse Radiotherapy-Induced Premature Ovarian Failure: Emphasis on Signal Integration of TGF-β, Wnt/β-Catenin and Hippo Pathways. Stem Cell Rev Rep. 2021; 17(4):1429-1445. doi: 10.1007/s12015-021-10135-9.
8. Moslem M., Valojerdi R.M., Pourmasr B., et al. Therapeutic potential of human induced pluripotent stem cell-derived mesenchymal stem cells in mice with lethal fulminant hepatic failure. Cell Transplant. 2013; 22(10):1785-99. doi: 10.3727/096368912X662462.
9. Xu Z., He B., Jiang Y., et al. Igf2bp2 knockdown improves CCl4-induced liver fibrosis and TGF-β-activated mouse hepatic stellate cells by regulating Tgfbr1. Int Immunopharmacol. 2022; 110:108987. doi: 10.1016/j.intimp.2022.108987.
10. Maruyama M., Rhee C., Utsunomiya T., et al. Modulation of the Inflammatory Response and Bone Healing. Front Endocrinol (Lausanne). 2020; 11;11:386. doi: 10.3389/fendo.2020.00386.
11. Маклакова И.Ю., Ястребов А.П., Гребнев Д.Ю. Изменение морфометрических и цитологических показателей селезенки при острой кровопотере на фоне введения стволовых клеток. Успехи геропнтологии. 2015; 28(2): 218-221.
12. Arai Y., Lee S.-H. MMP12-Overexpressing Mesenchymal Stem Cella EnHance Bone Tissue Formation in the Presence of Collagen Hydrogel. Tissue End Regen Med. 2023; 20(3):461-471. doi: 10.1007/s13770-023-00535-y.
13. Hakki S. Bozkurt B.S., Hakki E.E., et al. SDF-1 modulates periodontal ligament-Mesenchymal Stem Cells (pdl-MSCs). J Periodontal Res. 2021; 56(4):774-781. doi: 10.1111/jre.12876.
14. Гребнев Д.Ю., Маклакова И.Ю., Ястребов А.П. Перспектива использования стволовых клеток для активации кроветворения у условиях возрастно инволюции на фоне воздействия ионизирующего излучения. Успехи геронтологии. 2014; 27(2):348-352.
15. Zhang X., Sharma P., Maschmeyer P., et al. GARP on hepatic stellate cells is essential for the development of liver fibrosis. Hepatol. 2023; 79(5):1214-1225. doi: 10.1016/j.jhep.2023.05.043.
16. Dhar D., Baglieri J., Kisseleva T., et al. Mechanisms of liver fibrosis and its role in liver сancer. Exp Biol Med. 2020; 245(2):96-108. https://doi.org/10.1177/153537021989
17. Roehien N., Crouchet E., Baumert T.F. Liver Fibrosis: Mechanistic Concepts and Therapeutic Perspectives. Cells. 2020; 3:9(4):875. doi: 10.3390/cells9040875.
18. Krenkel O., Puengel T., Govaere O., et al. Therapeutic inhibition of inflammatory monocyte recruitment reduces steatohepatitis and liver fibrosis. Hepatology. 2018; 67(4):1270-1283. doi: 10.1002/hep.29544.

Опубликован
27-10-2025
Как цитировать
Гребнев Д. Ю., Маклакова И. Ю., Слаутин В. Н., Александрова А. Д. Антифибротическое действие плацентарных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток при фиброзе печени // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2025. Т. 69. № 4. С. 89–100.
Раздел
Оригинальные исследования